检验标本采集和送检血液标本

湖南白癜风医院 http://pf.39.net/bdfyy/zjdy/171025/5789682.html
检验标本采集和送检的基本原则

正确的标本采集、储存、运送是保证临床实验结果准确性的关键因素之一，临床患者标本的采集和送检（容器、方法、储存、运送）直接关系到检验结果的准确性。因此，规范的标本采集和送检方式尤为重要。

标本采集的基本原则是保持离体标本质和量的完整性。任何离开人体的标本，要尽可能保持当时的生理或病理的固有状态，使标本的有形部分和无形成分基本不变。因此，标本采集前和采集后需根据检验项目的特点，进行各种方法的处理。标本采集后越能及时送检，检验结果就越可靠。

标本采集和送检的基本原则包括：①准确、全面、清楚地输入检验申请单和检验项目。②根据检验项目准确选择收集标本的容器，1份标本附1张检验申请单或1个条码。③留取、采集标本前后仔细认真核对患者、标本容器、申请单、条码上的姓名及ID号是否一致；确认患者符合检验前要求，例如：禁食、用药情况、在预先规定的时间或时间间隔采集样品等。④标本采集后按照标本贮存要求立即送检，尽量减少标本贮存和运输时间。⑤请勿利用患者申请单送检他人或动物等不相符标本，这样会造成难以查找原因的错误，甚至严重误导诊疗过程。⑥标本送检及报告时间见后续检验项目更新。

1.静脉血标本

1.采集方法：静脉血标本推荐使用真空采血技术直针采集，从患者肘静脉或其它部位的静脉取血。

2.采集程序

2.1.收取检验申请单并审核申请单信息，审核合格后打印条码；检查完毕后，与患者交流、辨别患者状态，确认患者是否按规定限制饮食，以及是否对乳胶敏感。

2.2.准备采集材料，指导患者做好体位准备，扎好止血带，找好采血静脉部位，戴好手套。

2.3.穿刺点消毒，静脉穿刺采集血液。

2.4.移除穿剌针，并将穿刺针置入利器盒内，嘱咐患者压迫穿刺点，标记试管并注明采集时间，立即送至相应实验室检测。

3.采集静脉血标本前医护人员注意事项：

3.1.在含有葡萄糖或电解质（含钾、钠、氯）的肌肉注射或静脉输液时，建议2～3小时以后方可采集静脉血标本进行这些项目的检验，以防止上述检验项目因输液引起的假性升高。如因抢救等原因需要在输液同时采血者，一定要在输液对侧采集标本，医生应正确评价检测结果。禁止从静脉注射处、中心静脉插管、静脉留置针处、肝素等保留的治疗通道中采集血标本。

3.2.止血带使用时间应少于1分钟（建议在针头穿刺进入血管后即可放松止血带），以免引起血液淤滞，局部组织缺氧，造成血液某些成分的改变。

3.3.血标本应防止溶血。引起溶血的原因有：

3.3.1.皮肤上用于消毒的消毒液未干就进行穿刺；

3.3.2.穿刺定位进针不准，造成淤血而导致溶血；

3.3.3.采血时压迫静脉过久或止血带使用时间过长；

3.3.4.注射器因漏气产生气泡造成溶血；

3.3.5.注射器采血时抽吸力太大；

3.3.6.用注射器针头强力将血液注入试管；

3.3.7.用力摇动血液或拨动血块；

3.3.8.抗凝剂和血液比例不当，渗透压改变造成溶血；

3.3.9.容器等带水或材料中成分影响造成溶血；

3.3.10.真空采血时如未采满至相应刻度，可由于残存负压造成红细胞破裂；

3.3.11.放置时间长、反复冻融、突然冷热以及离心力过大等。

因血液中红细胞内外成分有很大差异，溶血可造成红细胞内的物质向细胞外转移，如K+、Mg2＋和某些酶类（LDH、AST、ALT）；另外，溶血还可干扰某些化学项目（如TB、DB、TC等）的测定，严重影响结果的准确性。

严重溶血标本原则上不能使用，应重新采血送检，特殊原因不能重新采样者应与临床相关医护人员沟通得到临床确认，并在报告中注明溶血及溶血程度字样，提醒医生注意，并做好记录。

3.4.正确选择采血管。通常情况下临床检验多采用血清作标本（不抗凝），但一些特殊检验项目需要使用抗凝剂时，应注意选择合适的抗凝剂并注意抗凝剂与血液的比例，以防止标本凝血或红细胞形态的改变；抗凝血标本采集后立即轻轻摇匀（上下颠倒8次），以防凝血发生。检验项目正确采血管选用请参照各专业组检验项目一览表。

3.5.多项检验采血顺序

直针式采血方式：血培养瓶（厌氧瓶优先）→蓝帽管→红帽管→黄帽管→绿帽管→紫帽管。

蝶翼针采血方式：血培养瓶（需氧瓶优先）。

3.6.注意标本采集后应及时送至实验室，建议当标本采集处温度超过22℃，应尽快将标本进行转运，避免某些分析物遭到破坏。标本应避免日光直接照射，防止如胆红素、尿酸等对紫外线敏感的物质浓度降低。

4.采集静脉血标本前患者注意事项：

4.1.避免剧烈运动

强烈肌肉运动明显影响体内代谢，引起血中某些成分浓度的改变，如乳酸、CK、AST、LDH、ALP等升高，故一般主张抽血前24小时内不做剧烈运动。清晨取血，住院患者可在起床前取血，匆忙赶到门诊的人应至少休息15分钟后取血。

4.2.注意合理饮食

除了急诊或其它特殊原因外，一般主张正常饮食3天后采血，应避免暴饮暴食及刻意控制饮食。应在空腹8～14小时后第二天清晨采血。如有特殊饮食要求，请遵医嘱。餐后或延长空腹时间（饥饿）均可引起血液化学成分的改变。餐后血糖、血钾、碱性磷酸酶及甘油三酯通常升高，无机磷降低；饥饿时血糖及蛋白质降低，胆红素升高；另外饮食的量及质对检验结果也有影响，如高蛋白饮食可使尿素、血氨、尿酸升高；高脂肪饮食引起乳糜微粒血症，导致脂血（混浊）；饮水过多或过少可使血液稀释或浓缩。

4.3.饮酒的影响

立即影响的是乳酸、尿酸升高；连续饮酒AST、ALT上升，而GGT上升最为明显。长期饮酒者往往有高甘油三酯血症，GGT也会长期不正常。

4.4.避免紧张与情绪激动

否则可以影响神经－内分泌功能检验项目。

4.5.药物影响

很多药物可使某些检验项目的结果增高或降低，如咖啡因可使血糖和胆固醇增高；冠心平可使甘油三酯和乳酸脱氢酶减低；维生素C可使乳酸脱氢酶减低；口服避孕药可使转氨酶升高等。故患者在检验前应尽可能停服对检验有干扰的药物。

4.6.取血时体位的影响

体位（站立、坐位、卧位）改变可以引起某些检验指标的显著变化，故建议住院患者以卧位最佳，门诊患者取血时以坐位5分钟后取血为宜。

4.7.做内分泌等功能实验时，需要做特殊准备，请遵医嘱。

2.动脉血标本

1.采集方法

动脉血标本采集使用一次性肝素化注射器或血气专用采集管，从患者股动脉、肱动脉或桡动脉取血，血抽出后用一块小橡皮封针头以隔绝空气，并将注射器放在手中双手来回搓动，使血液和抗凝剂充分混匀，立即送检。

2.注意事项

2.1.动脉穿剌不同于静脉穿刺，选择合适的动脉非常重要，常用的动脉包括桡动脉、肱动脉、股动脉和足背动脉等，选择的原则是穿刺动脉存在足够的侧支循环血液流注的部位，减少因缺乏末梢血液流经而使穿刺部位发生的并发症，穿刺前应注意检查侧支循环的情况。

2.2.抽血过程中出现的小气泡须在抽血后立即排出，切记隔绝空气是极重要的，因空气中的氧分压高于动脉血，二氧化碳分压低于动脉血。根据气体规律，高分压流向低分压，从而使血液中PO2及PCO2都改变而无测定价值。

2.3.血气标本必须在15分钟内送检。血液不得放置过久，因为血细胞还在继续新陈代谢，使pH及PO2下降，PCO2上升，影响数据的准确性。

3.末梢血标本

核对医嘱合格后，嘱患者做好准备，按摩采血部位使局部组织自然充血，用75%乙醇棉球消毒采血部位皮肤，待干后针刺。

用左手拇指和食指捏紧采血部位使采血部位的皮肤和皮下组织绷紧，右手持一次性采血针，自指尖腹内侧迅速穿刺，立即出针，拭血(待血液自然流出后，用消毒干棉球擦去第1滴血)，轻轻按摩针刺周围组织，尽量使血液自然流出，用末梢采血管收集流出的血液至需要的量，使用消毒棉球压迫伤口，充分混匀标本后立即送检。

4.血（骨髓）培养标本

1.采集方法

1.1.皮肤消毒程序

防止皮肤寄生菌或环境微生物的污染是血培养的关键。因此，采血时严格执行消毒程序：

1.1.1三步消毒法：

①75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上；②用碘酊或聚维酮碘（碘伏）棉签消毒皮肤（1%～2%碘酊作用30s或聚维酮碘作用60s），从穿刺点向外以3cm直径画圈进行消毒；③75%酒精脱碘。对碘过敏的病人只能用75%酒精消毒，消毒60s，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。

1.1.2一步消毒法：0.5%葡萄糖酸洗必泰消毒30s（不适用于2个月以内的新生儿），或70%异丙醇消毒后自然干燥（适用于2个月以内的新生儿）。

注意：穿刺点消毒后不可再触碰。

1.2.培养瓶消毒程序

打开培养瓶盖弃掉，用75％酒精消毒血培养瓶橡胶塞，使消毒液作用30～60s，在怀疑炭疽芽胞杆菌或丝状真菌感染时使用碘液消毒，待消毒剂晾干后注入血液以减少消毒剂的影响。

1.3.培养瓶接种程序

抽取血液后，不要换针头，直接注入消毒好瓶塞的血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，以防血液凝固。如果同时作需氧和厌氧培养，使用蝶翼针采血时应先将标本接种到需氧瓶中，然后再注入厌氧瓶，严格防止将空气注入厌氧瓶中。

2.采血部位

通常采血部位为肘静脉，疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉为宜。对疑为细菌性骨髓炎或伤寒患者，在病灶或髂前（后）上棘处采取骨髓培养。在怀疑导管相关性血流感染时，可以分别通过导管和外周静脉采取相同量的血标本。

3.注意事项

3.1.检验申请单一定要完整清楚，特别是标本来源、是否用过抗生素、采样时间、临床诊断等，有利于检验科综合分析判断，得出准确结论。

3.2.标本采集时间应在患者发热初期或寒战时，并且要在用抗生素之前或停药一周后，只有这样才能得到较高的阳性率。如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。

3.3.注意血培养瓶的选择。中和抗生素需氧瓶（绿色帽），中和抗生素厌氧瓶（橙色帽），儿童血培养瓶（黄色帽）。

3.4.血培养宜单独采血，与其他检测项目同时采血，应先采集血培养瓶，以避免污染。

4.血培养采集的时间和频率

4.1.采血培养应尽量在抗菌药物使用之前，在24h内在不同部位采集2～3套血培养（每套为需氧瓶及厌氧瓶各一瓶）。有研究证实，2～3套血培养足以检测所有的菌血症和真菌血症。

4.2.入院前2周内接受抗菌药物治疗的患者，需连续3天采集，每天采集2套血培养。

4.3.对间歇性寒战或发热的患者，应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1h采集血液，或于寒战或发热后1h采集。

4.4.可疑为急性原发性菌血症、真菌血症、脑膜炎、骨髓炎、关节炎或肺炎的患者，应在不同部位采集2～3套血培养。

4.5.不明原因发热，如隐性脓肿、伤寒热和波浪热，先采集2～3套血标本，24～36h后估计体温升高之前（通常在下午），再采集2套以上。

4.6.可疑为细菌性心内膜炎，在1～2h内多部位采集3套血标本，如果24h阴性，再采集3套以上的血培养。

5.采集标本量

5.1.血液量太多或太少都不利于细菌的检出，血液的培养量每增加1ml，阳性率增加3%～5%。注入血液太多可能会凝集出现假阳性。

5.2.成人：推荐每个血培养瓶应加的血量为8～10ml。

5.3.儿童：因很难获得大量的血液，一般静脉采血1～5ml用于血培养。

5.4.骨髓采集量一般为1～2ml。

5.5.其它体液，如脑脊液、关节液等，可采集2～5ml置于儿童瓶。

6.标本保存运输

6.1.含血样的培养瓶应立即送往实验室；如不能及时送检，应将其放在室温，切忌冰箱存放。因为某些苛氧菌可在冰箱温度中死亡，而使培养阳性率下降。

6.2.在运往实验室的途中如果天气寒冷，应采取一定的保温措施。标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。

5.患者自采血液标本

1.原则上应该使用我院采血管，如特殊情况使用其它类别采血管应经过专业组组长或监督员同意；

2.患者本人或其指定人员送至检验科，阅读并填写检验科出具的《患者自采血样标本知情同意书》。